原理

利用酶標記抗原（抗體）和待測抗體（抗原）在電場中向一定方向移動，在比例適當的地方形成沉淀線，通過酶作用底物而顯色，指示沉淀線的存在。該法的敏感性大大高于對流免疫電泳。

本試驗以檢測血吸蟲抗體為例。

材料與試劑

1．0.02Mol/pH 8.6巴比妥緩沖液

巴比妥 0.553g

巴比妥鈉 3.503g

乳酸鈣 0.512g

H2O 加至 1 000ml

2．0.1Mol/L pH7.0PBS（0.14Mol/L Nacl）

3．0.2Mol/L pH7.6硼酸緩沖液

硼酸 10.510g

硼砂 2.860g

H2O 加至 1000ml

操作方法

1．酶標抗原的制備 用1ml血吸蟲卵抗原（蛋白含量為1.5mg/ml~2.0mg/ml）加入3mg~4mg辣根過氧化物酶（蛋白質：酶=1︰2），液體呈棕紅色，然后在輕輕攪拌下，緩慢加入50μl 1％戊二醛，要求在5min~10min內滴加完畢。置20℃~25℃攪拌2h。裝入透析袋，于1000ml、0.1Mol/L pH7.0PBS液4℃透析2天，并換液3次~4次。取出酶標記物加等量純甘油，使含50％甘油試劑，即為酶標抗原。分裝小瓶，存于-20℃中備用。

2．瓊脂凝膠板的制備 取優質瓊脂，以0.02Mol/L pH8.6巴比妥緩沖液制成1％瓊脂，溶化后，置于玻片上，制成2mm厚的凝膠板。

3．打孔加樣 打6對孔，抗原孔徑為0.30cm，抗體孔為長方形0.2cm×1.1cm。抗原、抗體各加5μl及50μl。抗原用上述酶標抗原做1︰20至1︰30稀釋。

4．電泳 抗原孔置于負極，電壓4 V/cm ~5V/cm，電泳時間45min~60min，電泳后，于蒸餾水中蕩洗1min~2min即可，用濾紙吸去水分，并用毛細吸管吸盡長孔及圓孔中的水液后，即可用底物的溶液顯色。

5．配制底物溶液，現用現配。將飽和聯苯胺溶液，加等量pH7.6硼酸緩沖液，然后將上液9份和0.1％過氧化氫1份相混，即為所需的底物溶液。

6．免疫酶染色 將瓊脂凝膠板置于培養皿中，緩緩傾入底物溶液，直至浸沒凝膠板為止，置于室溫或37℃，經1h~2h用目測可觀察反應結果。

結果判定

1．陽性反應：在抗原抗體孔之間呈現明顯的棕紅色的線條。

2．陰性反應：不出現棕紅色線條者。